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細(xì)胞裂解的方法你知道嗎?

點(diǎn)擊次數(shù):12245   發(fā)布時(shí)間:2023/11/14 9:52:36

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對(duì)于培養(yǎng)細(xì)胞樣品:
1.融解RIPA裂解液,混勻。取適當(dāng)量的裂解液,在使用數(shù)分鐘內(nèi)加入PMSF,使PMSF的zui終濃度為1mM。

2.對(duì)于貼壁細(xì)胞:去除培養(yǎng)液,用PBS、生理鹽水或無(wú)血清培養(yǎng)液洗一遍(如果血清中的蛋白沒(méi)有干擾,可以不洗)。按照6孔板每孔加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。用槍吹打數(shù)下,使裂解液和細(xì)胞充分接觸。通常裂解液接觸細(xì)胞1-2后,細(xì)胞就會(huì)被裂解。
對(duì)于懸浮細(xì)胞:離心收集細(xì)胞,用手指把細(xì)胞用力彈散。按照6孔板每孔細(xì)胞加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。再用手指輕彈以充分裂解細(xì)胞。充分裂解后應(yīng)沒(méi)有明顯的細(xì)胞沉淀。如果細(xì)胞量較多,必需分裝成50-100萬(wàn)細(xì)胞/管,然后再裂解。

3.充分裂解后,10000-14000g離心3-5分鐘,取上清,即可進(jìn)行后續(xù)的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。

裂解液用量說(shuō)明:通常6孔板每孔細(xì)胞加入150微升裂解液已經(jīng)足夠,但如果細(xì)胞密度非常高可以適當(dāng)加大裂解液的用量到200微升或250微升。

在試驗(yàn)中,不同的細(xì)胞采用不同的裂解方法。如研磨,細(xì)胞勻漿,TritonX--100,稀減法等等。那么,具體該怎樣選擇細(xì)胞的裂解方法?本節(jié)內(nèi)容主要圍繞組織樣本裂解細(xì)胞的方法做詳細(xì)介紹。

1.把組織剪切成細(xì)小的碎片。

2.融解RIPA裂解液,混勻。取適當(dāng)量的裂解液,在使用數(shù)分鐘內(nèi)加入PMSF,使PMSF的zui終濃度為1mM。

3.按照每20毫克組織加入150-250微升裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以適當(dāng)添加更多的裂解液,如果需要高濃度的蛋白樣品,可以適當(dāng)減少裂解液的用量。)

4.用玻璃勻漿器勻漿,直至充分裂解。

5.充分裂解后,10000-14000g離心3-5分鐘,取上清,即可進(jìn)行后續(xù)的PAGE、Western和免疫沉淀等操作。

6.如果組織樣品本身非常細(xì)小,可以適當(dāng)剪切后直接加入裂解液裂解,通過(guò)強(qiáng)烈vortex使樣品裂解充分。然后同樣離心取上清,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。直接裂解的優(yōu)點(diǎn)是比較方便,不必使用勻漿器,缺點(diǎn)是不如使用勻漿器那樣裂解得比較充分。

注:RIPA裂解液的裂解產(chǎn)物中經(jīng)常會(huì)出現(xiàn)一小團(tuán)透明膠狀物,屬正常現(xiàn)象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的復(fù)合物。在不檢測(cè)和基因組DNA結(jié)合特別緊密的蛋白的情況下,可以直接離心取上清用于后續(xù)實(shí)驗(yàn);如果需要檢測(cè)和基因組結(jié)合特別緊密的蛋白,則可以通過(guò)超聲處理打碎打散該透明膠狀物,隨后離心取上清用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如果檢測(cè)一些常見(jiàn)的轉(zhuǎn)錄因子,例如NF-kappaB、p53等時(shí),通常不必進(jìn)行超聲處理,就可以檢測(cè)到這些轉(zhuǎn)錄因子。
 

原創(chuàng)作者:上海恒遠(yuǎn)生物科技有限公司

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